Klotter, V. та ін. Оцінка патологічного збільшення жорсткості печінки дає змогу раніше діагностувати CFLD: результати проспективного поздовжнього когортного дослідження. PLoS ONE 12, e0178784 (2017).
Medrano, LM та ін. Підвищена жорсткість печінки пов’язана з підвищенням рівня біомаркерів запалення та імунної активації у пацієнтів, інфікованих ВІЛ/гепатитом С. СНІД 32, 1095 – 1105 (2018).
Tomlin, H. & Piccinini, AM Складна взаємодія між позаклітинним матриксом і вродженою імунною відповіддю на мікробні патогени. Імунологія 155, 186 – 201 (2018).
Martinez-Vidal, L. та ін. Причини, що сприяють жорсткості тканин і клінічне значення в урології. комун. біол. 4, 1011 (2021).
Mohammadi, H. & Sahai, E. Механізми та вплив зміненої механіки пухлини. Нац. Клітинна біол. 20, 766 – 774 (2018).
Du, H. та ін. Налаштування імунітету через тканинну механотрансдукцію. Нат Rev. Immunol. https://doi.org/10.1038/s41577-022-00761-w (2022).
Zhu, C., Chen, W., Lou, J., Rittase, W. & Li, K. Механочутливість через імунорецептори. Нац. Immunol. 20, 1269 – 1278 (2019).
Judokusumo, E., Tabdanov, E., Kumari, S., Dustin, ML & Kam, LC Механосенсінг в активації Т-лімфоцитів. Biophys. J. 102, L5 – L7 (2012).
О'Коннор, Р. С. та ін. Жорсткість субстрату регулює активацію та проліферацію Т-клітин людини. Дж. Іммунол. 189, 1330 – 1339 (2012).
Сайтакіс, М. та ін. Різні TCR-індуковані відповіді Т-лімфоцитів потенціюються жорсткістю зі змінною чутливістю. eLife 6, e23190 (2017).
Blumenthal, D., Chandra, V., Avery, L. & Burkhardt, JK Праймінг Т-клітин миші посилюється залежним від дозрівання зміцненням кори дендритних клітин. eLife 9, e55995 (2020). Важлива робота, яка проливає світло на механічний аспект опосередкованої дендритними клітинами активації Т-клітин.
Basu, R. та ін. Цитотоксичні Т-клітини використовують механічну силу для посилення знищення клітин-мішеней. Осередок 165, 100 – 110 (2016). Основне дослідження, яке підкреслює критичну роль механічних сил у цитотоксичній активності Т-клітин.
Liu, Y. та ін. М'якість клітин запобігає цитолітичному Т-клітинному знищенню клітин, які репопулюють пухлини. Рак Res. 81, 476 – 488 (2021).
Tello-Lafoz, M. та ін. Цитотоксичні лімфоцити націлені на характерні біофізичні вразливі місця при раку. Імунітет 54, 1037–1054.e7 (2021).
Lei, K. та ін. Зміцнення ракових клітин через виснаження холестерину посилює адаптивну Т-клітинну імунотерапію. Нац. Біомед. інж. 5, 1411 – 1425 (2021). Впливові дослідження (посилання 14,15, XNUMX), які показують, що посилення пухлинних клітин шляхом генетичних маніпуляцій, націлених на MRTF, або шляхом виснаження холестерину клітинної мембрани призводить до більшої вразливості до опосередкованого Т-клітинами знищення.
Provenzano, PP та ін. Реорганізація колагену на межі пухлини та строми сприяє локальній інвазії. BMC Med. 4, 38 (2006).
Левенталь К. Р. та ін. Зшивання матриці прискорює прогресування пухлини шляхом посилення сигналізації інтегрину. Осередок 139, 891 – 906 (2009).
Goetz, JG та ін. Біомеханічне ремоделювання мікрооточення стромальним кавеоліном-1 сприяє інвазії пухлини та метастазам. Осередок 146, 148 – 163 (2011).
Massagué, J. TGFβ при раку. Осередок 134, 215 – 230 (2008).
Інсуа-Родрігес Дж. та ін. Сигналізація стресу в клітинах раку молочної залози індукує компоненти матриці, які сприяють хіміорезистентним метастазам. EMBO Mol. Мед. 10, e9003 (2018).
Він, X. та ін. Фізичні властивості позаклітинного матриксу визначають дифузію наночастинок у мікрооточенні пухлини. Proc. Natl Acad. Sci. США 120, e2209260120 (2023).
Salmon, H. та ін. Матрична архітектура визначає переважну локалізацію та міграцію Т-клітин у строму пухлин легень людини. J. Clin. Invest. 122, 899 – 910 (2012).
Сальніков А. В. та ін. Зниження тиску пухлинної інтерстиціальної рідини особливо підвищує ефективність хіміотерапії. FASEB J. 17, 1756 – 1758 (2003).
Guck, J. та ін. Оптична деформованість як властивий клітині маркер для тестування злоякісної трансформації та метастатичної компетентності. Biophys. J. 88, 3689 – 3698 (2005).
Plodinec, M. та ін. Наномеханічний підпис раку молочної залози. Нат. Нанотехнол. 7, 757 – 765 (2012).
Chen, Y., McAndrews, KM & Kalluri, R. Клінічна та терапевтична значимість асоційованих з раком фібробластів. Нац. Преподобний Клін. онкол. 18, 792 – 804 (2021).
Gensbittel, V. та ін. Механічна адаптованість пухлинних клітин при метастазуванні. Розробник клітинка 56, 164 – 179 (2021). У цьому огляді представлена гіпотеза про те, що пухлинні клітини регулюють свої механічні властивості протягом метастатичного шляху.
Lv, J. та ін. М'якість клітин регулює пухлиногенність і стовбурність ракових клітин. EMBO J. 40, e106123 (2021).
Matthews, HK та ін. Онкогенна передача сигналів змінює форму та механіку клітин, щоб полегшити поділ клітин в умовах обмеження. Розробник клітинка 52, 563–573.e3 (2020).
Young, KM та ін. Кореляція даних механічної та генної експресії на рівні однієї клітини для дослідження метастатичних фенотипів. iScience 26, 106393 (2023).
Rianna, C., Radmacher, M. & Kumar, S. Прямі докази того, що пухлинні клітини розм'якшуються під час навігації в обмеженому просторі. Мол. біол. клітинка 31, 1726 – 1734 (2020).
Regmi, S., Fu, A. & Luo, KQ. Високі напруги зсуву в умовах фізичного навантаження руйнують циркулюючі пухлинні клітини в мікрофлюїдній системі. Sci. Rep. 7, 39975 (2017).
Moose, DL та ін. Ракові клітини протистоять механічному руйнуванню в кровообігу через залежну від роа/актоміозину механоадаптацію. Клітинна респ. 30, 3864–3874.e6 (2020).
Chen, J. та ін. Ефективна екстравазація клітин, що репопулюють пухлину, залежить від здатності клітин до деформації. Sci. Rep. 6, 19304 (2016).
Saito, D. та ін. Жорсткість примордіальних статевих клітин необхідна для їх екстравазації в пташиних ембріонів. iScience 25, 105629 (2022).
Er, EE та ін. Перицитоподібне поширення дисемінованими раковими клітинами активує YAP і MRTF для метастатичної колонізації. Нац. Клітинна біол. 20, 966 – 978 (2018).
Вень, З., Чжан, Ю., Лінь, З., Ши, К. і Цзю, Ю. Цитоскелет — важливий ключ у клітині-хазяїні для зараження коронавірусом. J. Mol. Стільниковий. Biol. 12, 968 – 979 (2021).
Paluck, A. та ін. Роль керованої комплексом ARP2/3 полімеризації актину в інфекції RSV. Збудники хвороб 11, 26 (2021).
Kubánková, M. та ін. Під час COVID-19 змінюється фізичний фенотип клітин крові. Biophys. J. 120, 2838 – 2847 (2021).
Янг, Дж., Барріла, Дж., Роланд, К. Л., Отт, С. М. і Нікерсон, Каліфорнія. Фізіологічний зсув рідини змінює вірулентний потенціал інвазивної мультирезистентної нетифозної хвороби. Сальмонела тифімуріум D23580. npj Мікрогравітація 2, 16021 (2016).
Padron, GC та ін. Швидкість зсуву сенсибілізує бактеріальні патогени до H2O2 стрес. Proc. Natl Acad. Sci. США 120, e2216774120 (2023).
Mikaty, G. та ін. Позаклітинний бактеріальний патоген індукує реорганізацію поверхні клітини господаря, щоб протистояти напрузі зсуву. PLoS Pathhog. 5, e1000314 (2009).
Kuo, C. та ін. Риновірусна інфекція індукує відкладення протеїну позаклітинного матриксу в астматичних і неастматичних гладком’язових клітинах дихальних шляхів. Am. J. Physiol. Легенева клітина. Мол. фізіол. 300, L951 – L957 (2011).
Nagy, N. та ін. Гіалуронан при імунній дисрегуляції та аутоімунних захворюваннях. Matrix Biol. 78-79, 292 – 313 (2019).
Фінглтон, Б. Матричні металопротеїнази як регулятори запальних процесів. Біохім. біофіз. Acta Mol. Cell Res. 1864, 2036 – 2042 (2017).
Крішнамурті, А. Т. і Терлі, С. Дж. Клітини строми лімфатичних вузлів: картографи імунної системи. Нац. Immunol. 21, 369 – 380 (2020).
Wynn, TA Інтеграція механізмів легеневого фіброзу. J. Exp. Мед. 208, 1339 – 1350 (2011).
Tschöpe, C. та ін. Міокардит і запальна кардіоміопатія: поточні дані та майбутні напрямки. Нац. Преподобний Кардіол. 18, 169 – 193 (2021).
Fabre, T. та ін. Ідентифікація підмножини широко фіброгенних макрофагів, індукованих запаленням типу 3. наук. Immunol. 8, eadd8945 (2023).
de Boer, RA та ін. До кращого визначення, кількісної оцінки та лікування фіброзу при серцевій недостатності. Наукова дорожня карта Комітету трансляційних досліджень Асоціації серцевої недостатності (HFA) Європейського товариства кардіологів. Євро. J. Heart Fail. 21, 272 – 285 (2019).
Лю, Ф. та ін. Посилення фіброзу через посилення матриці та пригнічення ЦОГ-2. J. Cell Biol. 190, 693 – 706 (2010).
Georges, PC та ін. Підвищена жорсткість печінки щурів передує відкладенню матриці: наслідки для фіброзу. Am. J. Physiol. Гастроінтест. Фізіологія печінки. 293, G1147–G1154 (2007).
Stock, KF та ін. Кількісна оцінка еластичності тканин на основі ARFI порівняно з гістологією для діагностики фіброзу ниркового трансплантата. Clin. Гемореол. мікроциркулятор. 46, 139 – 148 (2010).
Gadd, VL та ін. Портальний запальний інфільтрат і протокова реакція при неалкогольній жировій хворобі печінки людини. гепатологія 59, 1393 – 1405 (2014).
Могиленко Д. А., Щукіна І. та Артьомов М. Н. Імунне старіння при одноклітинному розділенні. Нат Rev. Immunol. 22, 484 – 498 (2022).
Роман, MJ та ін. Жорсткість артерій при хронічних запальних захворюваннях. Гіпертонія 46, 194 – 199 (2005).
Klingberg, F., Hinz, B. & White, ES. Матрикс міофібробластів: наслідки для відновлення тканин і фіброзу: матрикс міофібробластів. Я. Патол. 229, 298 – 309 (2013).
Лю, Ф. та ін. Механосигналізація через YAP і TAZ стимулює активацію фібробластів і фіброз. Am. J. Physiol. Легенева клітина. Мол. фізіол. 308, L344 – L357 (2015).
Tomasek, JJ, Gabbiani, G., Hinz, B., Chaponnier, C. & Brown, RA Міофібробласти та механорегуляція ремоделювання сполучної тканини. Нац. Преподобний мол. Клітинна біол. 3, 349 – 363 (2002).
Munger, JS та ін. Механізм регуляції легеневого запалення та фіброзу: інтегрин αvβ6 зв’язує та активує латентний TGF β1. Осередок 96, 319 – 328 (1999).
Сантос, А. і Лагарес, Д. Жорсткість матриці: провідник фіброзу органів. Curr. ревматол. Представник 20, 2 (2018).
Морван, М. Г. і Ланьє, Л. Л. Клітини NK і рак: ви можете навчити вроджені клітини новим прийомам. Нац. Преподобний Рак 16, 7 – 19 (2016).
Джейнвей, Каліфорнія Як працює імунна система, захищаючи хазяїна від інфекції: особистий погляд. Proc. Natl Acad. Sci. США 98, 7461 – 7468 (2001).
Дастін, М. Л. Активація Т-клітин через імунологічні синапси та кінапси. Immunol. Рев. 221, 77 – 89 (2008).
Фенг, Ю., Чжао, X., Вайт, А. К., Гарсія, К. С. і Фордайс, П. М. Метод на основі кульок для високопродуктивного картографування залежності послідовності та сили активації Т-клітин. Нат. Методи 19, 1295 – 1305 (2022).
Mordechay, L. та ін. Механічна регуляція цитотоксичної активності природних клітин-кілерів. ACS Biomater. наук. інж. 7, 122 – 132 (2021).
Lei, K., Kurum, A. & Tang, L. Механічна імуноінженерія Т-клітин для терапевтичного застосування. Відповідно до Хім. Рез. 53, 2777 – 2790 (2020). Всебічний огляд останніх досягнень механічної імуноінженерії та їх потенційного терапевтичного застосування.
Seghir, R. & Arscott, S. Розширений діапазон жорсткості PDMS для гнучких систем. Чутливі приводи Фіз. 230, 33 – 39 (2015).
Guimarães, CF, Gasperini, L., Marques, AP & Reis, RL Жорсткість живих тканин і її значення для тканинної інженерії. Нац. Преподобний Матер. 5, 351 – 370 (2020).
Denisin, AK & Pruitt, BL Налаштування діапазону жорсткості поліакриламідного гелю для застосування в механобіології. ACS Appl. Матер. Інтерфейси 8, 21893 – 21902 (2016).
Geissmann, F. та ін. Розвиток моноцитів, макрофагів і дендритних клітин. наука 327, 656 – 661 (2010).
Follain, G. та ін. Рідини та їх механіка при транзиті пухлини: формування метастазів. Нац. Преподобний Рак 20, 107 – 124 (2020).
Baratchi, S. та ін. Транскатетерна імплантація аортального клапана являє собою протизапальну терапію шляхом зменшення активації моноцитів, спричиненої напругою зсуву, опосередкованої п’єзо-1. Звернення 142, 1092 – 1105 (2020).
Serafini, N. та ін. Канал TRPM4 контролює функцію моноцитів і макрофагів, але не нейтрофілів, для виживання при сепсисі. Дж. Іммунол. 189, 3689 – 3699 (2012).
Beningo, KA & Wang, Y. Fc-рецептор-опосередкований фагоцитоз регулюється механічними властивостями мішені. J. Cell Sci. 115, 849 – 856 (2002).
Sosale, NG та ін. Жорсткість і форма клітин перекривають «самосигналізацію» CD47 у фагоцитозі шляхом гіперактивації міозину-II. Кров 125, 542 – 552 (2015).
Срідхаран, Р., Кавана, Б., Камерон, А. Р., Келлі, Ді-Джей і О'Брайен, Ф. Дж. Жорсткість матеріалу впливає на стан поляризації, функцію та спосіб міграції макрофагів. Акта Біоматер. 89, 47 – 59 (2019).
Hu, Y. та ін. Візуалізація молекулярної сили показує, що інтегрин-залежна механічна контрольна точка регулює опосередкований Fcγ-рецептором фагоцитоз у макрофагах. Нано Летт. 23, 5562 – 5572 (2023).
Atcha, H. та ін. Механічно активований іонний канал Piezo1 модулює поляризацію макрофагів і відчуття жорсткості. Nat. Commun. 12, 3256 (2021).
Geng, J. та ін. Передача сигналів TLR4 через Piezo1 залучає та посилює опосередковану макрофагами відповідь господаря під час бактеріальної інфекції. Nat. Commun. 12, 3519 (2021).
Dupont, S. та ін. Роль YAP/TAZ у механотрансдукції. природа 474, 179 – 183 (2011).
Rice, AJ та ін. Жорсткість матриці індукує епітеліально-мезенхімальний перехід і сприяє хіміорезистентності в клітинах раку підшлункової залози. Онкогенез 6, e352 (2017).
Oliver-De La Cruz, J. et al. Механіка субстрату контролює адипогенез через фосфорилювання YAP, диктуючи поширення клітин. Біоматеріали 205, 64 – 80 (2019).
Мелі В. С. та ін. YAP-опосередкована механотрансдукція налаштовує запальну реакцію макрофагів. наук. Adv. 6, eabb8471 (2020).
Штейнман, Р. М. Рішення щодо дендритних клітин: минуле, теперішнє та майбутнє. Анну. Rev. Immunol. 30, 1 – 22 (2012).
Moreau, HD та ін. Макропіноцитоз долає зміщення спрямованості в дендритних клітинах завдяки гідравлічному опору та полегшує дослідження космосу. Розробник клітинка 49, 171–188.e5 (2019).
Laplaud, V. та ін. Затискання кори живих клітин виявляє нестабільність товщини, викликану двигунами міозину II. Наук. Адв. 7, eabe3640 (2021).
Barbier, L. та ін. Активність міозину II вибірково необхідна для міграції в дуже обмежених мікросередовищах у зрілих дендритних клітинах. Фронт. Імунол. 10, 747 (2019).
Chabaud, M. та ін. Міграція клітин і захоплення антигену є антагоністичними процесами, поєднаними міозином II у дендритних клітинах. Nat. Commun. 6, 7526 (2015).
Leithner, A. та ін. Динаміка актину дендритних клітин контролює тривалість контакту та ефективність праймінгу в імунологічному синапсі. J. Cell Biol. 220, e202006081 (2021).
Кан, Дж.-Х. та ін. Біомеханічні сили посилюють спрямовану міграцію та активацію дендритних клітин кісткового мозку. Sci. Rep. 11, 12106 (2021).
van den Dries, K. та ін. Розпізнавання геометрії дендритними клітинами визначає просторову організацію та індуковане PGE2 розчинення подосом. Стільниковий. мол. Life Sci. 69, 1889 – 1901 (2012).
Чакраборті, М. та ін. Механічна жорсткість контролює метаболізм і функцію дендритних клітин. Клітинна респ. 34, 108609 (2021).
Mennens, SFB та ін. Жорсткість субстрату впливає на фенотип і функцію людських антигенпрезентуючих дендритних клітин. Sci. Rep. 7, 17511 (2017).
Figdor, CG, van Kooyk, Y. & Adema, GJ Рецептори лектину C-типу на дендритних клітинах і клітинах Лангерганса. Нат Rev. Immunol. 2, 77 – 84 (2002).
Bufi, N. та ін. Клітини первинного імунітету людини демонструють чіткі механічні властивості, які змінюються запаленням. Biophys. J. 108, 2181 – 2190 (2015).
Comrie, WA, Babich, A. & Burkhardt, JK Потік F-актину керує дозріванням спорідненості та просторовою організацією LFA-1 в імунологічному синапсі. J. Cell Biol. 208, 475 – 491 (2015).
Wang, Y. та ін. Дендритна клітина Piezo1 керує диференціюванням TH1 і ТРеджо клітин при раку. eLife 11, e79957 (2022).
Валігнат, М.-П. та ін. Лімфоцити можуть самостійно пасивно керувати флюгерними уроподами. Nat. Commun. 5, 5213 (2014).
Рой, Н. Х., Маккей, Дж. Л., Робертсон, Т. Ф., Хаммер, Д. А. і Буркхардт, Дж. К. Адаптерні білки Crk опосередковують актин-залежну міграцію Т-клітин і механочутливість, індуковану інтегрином LFA-1. наук. Сигнал. 11, eaat3178 (2018).
Hope, JM та ін. Напруга зсуву рідини посилює активацію Т-клітин через Piezo1. BMC Biol. 20, 61 (2022).
Husson, J., Chemin, K., Bohineust, A., Hivroz, C. & Henry, N. Формування сили при залученні рецептора Т-клітин. PLoS ONE 6, e19680 (2011). Елегантне використання методу вимірювання сили біомембрани для вимірювання сил, які діють Т-клітинами під час взаємодії з антигенпрезентуючими клітинами.
Liu, B., Chen, W., Evavold, BD & Zhu, C. Накопичення динамічних зв’язків між TCR і агоністичним пептидом-MHC запускає сигналізацію Т-клітин. Осередок 157, 357 – 368 (2014).
Thauland, TJ, Hu, KH, Bruce, MA & Butte, MJ Адаптивність цитоскелета регулює сигналізацію Т-клітинних рецепторів. наук. Сигнал. 10, eaah3737 (2017).
Гартнер, Ф. та ін. WASp запускає механочутливі ділянки актину, щоб полегшити міграцію імунних клітин у щільних тканинах. Розробник клітинка 57, 47–62.e9 (2022).
Majedi, FS та ін. Активація Т-клітин модулюється тривимірним механічним мікрооточенням. Біоматеріали 252, 120058 (2020).
Wang, H. та ін. ZAP-70: незамінна кіназа в Т-клітинній сигналізації. Холодна весна Харб. Повага. Біол. 2, a002279 (2010).
Bashour, KT та ін. CD28 і CD3 відіграють додаткову роль у силах тяги Т-клітин. Proc. Natl Acad. Sci. США 111, 2241 – 2246 (2014).
Hu, KH & Butte, MJ Для активації Т-клітин потрібна генерація сили. J. Cell Biol. 213, 535 – 542 (2016).
Liu, Y. та ін. Датчики натягу наночастинок на основі ДНК показують, що рецептори Т-клітин передають певні сили pN своїм антигенам для підвищення точності. Proc. Natl Acad. Sci. США 113, 5610 – 5615 (2016).
Табданов Е. та ін. Мікропатернування лігандів TCR і LFA-1 виявляє взаємодоповнюючі ефекти на механіку цитоскелета в Т-клітинах. інтегр. Biol. 7, 1272 – 1284 (2015).
Govendir, MA та ін. Цитоскелетні сили Т-клітин формують топографію синапсів для цілеспрямованого лізису через зсув кривизни мембрани перфорину. Розробник клітинка 57, 2237–2247.e8 (2022).
Wang, MS та ін. Механічно активні інтегрини націлені на літичну секрецію в імунному синапсі, щоб полегшити клітинну цитотоксичність. Nat. Commun. 13, 3222 (2022).
Liu, CSC та ін. Передовий край: механосенсори Piezo1 оптимізують активацію Т-клітин людини. Дж. Іммунол. 200, 1255 – 1260 (2018).
Jin, W. та ін. Активація Т-клітин і організація імунного синапсу реагують на мікромасштабну механіку структурованих поверхонь. Proc. Natl Acad. Sci. США 116, 19835 – 19840 (2019).
Кумарі С. та ін. Напруга цитоскелета активно підтримує синаптичний контакт мігруючих Т-клітин. EMBO J. 39, e102783 (2020).
Huby, RDJ, Weiss, A. & Ley, SC Нокодазол інгібує трансдукцію сигналу рецептором Т-клітинного антигену. Дж. Біол. Хімія 273, 12024 – 12031 (1998).
Le Saux, G. та ін. Нанорозмірне механочутливість природних клітин-кілерів виявляється за допомогою нанодротів, функціоналізованих антигеном. Адв. Матер. 31, 1805954 (2019).
Bhingardive, V. та ін. Механостимулююча платформа на основі нанодротів для регульованої активації природних клітин-кілерів. Адв. Функціональний. Матер. 31, 2103063 (2021).
Brumbaugh, KM та ін. Функціональна роль тирозинкінази Syk у природній цитотоксичності, опосередкованій клітинами-кілерами. J. Exp. Мед. 186, 1965 – 1974 (1997).
Маталон О. та ін. Ретроградний потік актину контролює реакцію природних клітин-кілерів, регулюючи конформаційний стан SHP-1. EMBO J. 37, e96264 (2018).
Garrity, D., Call, ME, Feng, J. & Wucherpfennig, KW. Активуючий рецептор NKG2D збирається в мембрані з двома сигнальними димерами в гексамерну структуру. Proc. Natl Acad. Sci. США 102, 7641 – 7646 (2005).
Friedman, D. та ін. Формування імунного синапсу природних клітин-кілерів і цитотоксичність контролюються натягом цільової поверхні. J. Cell Sci. 134, jcs258570 (2021).
Янамандра, А. К. та ін. Механочутливість, опосередкована PIEZO1, керує ефективністю знищення клітин NK у 3D. Препринт на https://doi.org/10.1101/2023.03.27.534435 (2023).
Ван, З. та ін. Активація В-клітин регулюється властивостями жорсткості субстрату, що представляє антигени. Дж. Іммунол. 190, 4661 – 4675 (2013).
Натканскі, Е. та ін. В-клітини використовують механічну енергію для визначення афінності антигену. наука 340, 1587 – 1590 (2013).
Merino-Cortés, SV та ін. Діацилгліцеролкіназа ζ сприяє ремоделюванню цитоскелету актину та механічним силам у імунному синапсі В-клітин. наук. Сигнал. 13, eaaw8214 (2020).
Zeng, Y. та ін. Жорсткість субстрату регулює активацію В-клітин, проліферацію, перемикання класів і незалежні від Т-клітин відповіді антитіл in vivo: клітинна імунна відповідь. Євро. J. Immunol. 45, 1621 – 1634 (2015).
Новосад, К. Р., Спіллейн, К. М. і Толар, П. В-клітини зародкового центру розпізнають антиген через спеціалізовану архітектуру імунного синапсу. Нац. Immunol. 17, 870 – 877 (2016).
Jiang, H. & Wang, S. Імунні клітини використовують активні тягнучі сили для розрізнення спорідненості та прискорення еволюції. Proc. Natl Acad. Sci. США 120, e2213067120 (2023).
Stanton, RJ та ін. HCMV pUL135 реконструює актиновий цитоскелет, щоб погіршити імунне розпізнавання інфікованих клітин. Клітинний мікроб-хазяїн 16, 201 – 214 (2014).
Pai, RK, Convery, M., Hamilton, TA, Boom, WH & Harding, CV Інгібування індукованої IFN-γ експресії трансактиватора класу II ліпопротеїном 19 кДа з Мікобактеріальний туберкульоз: потенційний механізм імунного ухилення. Дж. Іммунол. 171, 175 – 184 (2003).
Самасса, Ф. та ін. Shigella порушує реакцію людських Т-лімфоцитів шляхом захоплення динаміки цитоскелету актину та везикулярного обміну рецепторами Т-клітин. Стільниковий. мікробіол. 22, e13166 (2020).
Hanč, P. та ін. Структура комплексу F-актину та DNGR-1, рецептора лектину С-типу, який бере участь у перехресній презентації антигенів, асоційованих з мертвою клітиною в дендритних клітинах. Імунітет 42, 839 – 849 (2015).
Ман, С. М. та ін. Полімеризація актину як ключовий вроджений імунний ефекторний механізм для контролю Сальмонела інфекції. Proc. Natl Acad. Sci. США 111, 17588 – 17593 (2014).
Jacobson, EC та ін. Міграція через маленькі пори порушує неактивну організацію хроматину в нейтрофілоподібних клітинах. BMC Biol. 16, 142 (2018).
Solis, AG та ін. Механочутливість циклічної сили за допомогою PIEZO1 є важливою для вродженого імунітету. природа 573, 69 – 74 (2019).
Robledo-Avila, FH, Ruiz-Rosado, J., de, D., Brockman, KL & Partida-Sánchez, S. Іонний канал TRPM2 регулює запальні функції нейтрофілів під час лістерій інфекції. Фронт. Імунол. 11, 97 (2020).
Meng, KP, Majedi, FS, Thauland, TJ & Butte, MJ Механосенсинг через YAP контролює активацію та метаболізм Т-клітин. J. Exp. Мед. 217, e20200053 (2020). Це дослідження проливає світло на Т-клітини, які сприймають механічні сигнали свого оточення та відповідно налаштовують свою реакцію.
Al-Aghbar, MA, Jainarayanan, AK, Dustin, ML & Roffler, SR Взаємодія між топологією мембрани та механічними силами в регуляції активності рецепторів Т-клітин. комун. біол. 5, 40 (2022).
Вонг, VW та ін. Механічна сила подовжує гостре запалення через Т-клітинно-залежні шляхи під час утворення рубця. FASEB J. 25, 4498 – 4510 (2011).
Chen, DS & Mellman, I. Онкологія зустрічається з імунологією: цикл рак-імунітет. Імунітет 39, 1 – 10 (2013).
O'Donnell, JS, Teng, MWL & Smyth, MJ Імуноредагування раку та стійкість до імунотерапії на основі Т-клітин. Нац. Преподобний Клін. онкол. 16, 151 – 167 (2019).
Dustin, ML & Long, EO Цитотоксичні імунологічні синапси: синапси NK і CTL. Immunol. Рев. 235, 24 – 34 (2010).
González-Granado, JM та ін. Ламін-А ядерної оболонки поєднує динаміку актину з імунологічною архітектурою синапсів і активацією Т-клітин. наук. Сигнал. 7, ra37 (2014).
González, C. та ін. Захоплюючий зв’язок нанотіло-CD16 виявляє механочутливість NK-клітин. Biophys. J. 116, 1516 – 1526 (2019).
Фан, Дж. та ін. NKG2D розрізняє різноманітні ліганди за допомогою вибірково механорегульованих конформаційних змін лігандів. EMBO J. 41, e107739 (2022).
Tsopoulidis, N. та ін. Формування мережі ядерного актину, викликане Т-клітинним рецептором, стимулює CD4+ Ефекторні функції Т-клітин. наук. Immunol. 4, eaav1987 (2019).
Тамзаліт, Ф. та ін. Міжфазні виступи актину механічно посилюють знищення цитотоксичними Т-клітинами. наук. Immunol. 4, eaav5445 (2019).
Sanchez, EE та ін. Апоптозне скорочення стимулює вивільнення клітин-мішеней цитотоксичними Т-клітинами. Нац. Immunol. https://doi.org/10.1038/s41590-023-01572-4 (2023).
Händel, C. та ін. Розм'якшення клітинної мембрани в клітинах раку грудей і шийки матки людини. NJ Phys. 17, 083008 (2015).
Huang, B., Song, B. & Xu, C. Метаболізм холестерину при раку: механізми та терапевтичні можливості. Нац. Метаб. 2, 132 – 141 (2020).
Hanna, RN та ін. Патрулюючі моноцити контролюють метастази пухлини в легені. наука 350, 985 – 990 (2015).
Vyas, M. та ін. Природні клітини-кілери пригнічують метастази раку, знищуючи циркулюючі ракові клітини. Фронт. Імунол. 13, 1098445 (2023).
Hu, B., Xin, Y., Hu, G., Li, K. & Tan, Y. Напруга зсуву рідини посилює цитотоксичність природних клітин-кілерів щодо циркулюючих пухлинних клітин через NKG2D-опосередковане механочутливість. APL Bioeng. 7, 036108 (2023).
Boussommier-Calleja, A. та ін. Вплив моноцитів на екстравазацію пухлинних клітин у 3D васкуляризованій мікрофлюїдній моделі. Біоматеріали 198, 180 – 193 (2019).
Содерквест К. та ін. Моноцити контролюють диференціацію природних клітин-кілерів до ефекторних фенотипів. Кров 117, 4511 – 4518 (2011).
Кумар, Б.В., Коннорс, Т.Дж. і Фарбер, Д.Л. Розвиток, локалізація та функціонування Т-клітин людини протягом життя. Імунітет 48, 202 – 213 (2018).
Surcel, A. та ін. Фармакологічна активація паралогів міозину II для виправлення дефектів клітинної механіки. Proc. Natl Acad. Sci. США 112, 1428 – 1433 (2015).
Mittelheisser, V. та ін. Оптимальні фізико-хімічні властивості кон’югатів антитіло–наночастинка для покращеного націлювання на пухлину. Адв. Матер. 34, 2110305 (2022).
Guo, P. та ін. Еластичність наночастинок спрямовує поглинання пухлини. Nat. Commun. 9, 130 (2018).
Liang, Q. та ін. М'якість мікрочастинок, отриманих з пухлинних клітин, регулює ефективність доставки ліків. Нац. Біомед. інж. 3, 729 – 740 (2019).
Chen, X. та ін. Специфічне усунення м’яких ракових стовбурових клітин за допомогою наночастинок шляхом націлювання на низьку жорсткість клітин. Акта Біоматер. 135, 493 – 505 (2021).
Perez, JE та ін. Перехідне посилення клітинної жорсткості, викликане впливом магнітних наночастинок. J. Нанобіотехнологія. 19, 117 (2021).
Liu, YX та ін. Механіка однієї клітини забезпечує ефективний засіб для дослідження взаємодії in vivo між альвеолярними макрофагами та наночастинками срібла. J. Phys. хім. Б 119, 15118 – 15129 (2015).
Binnewies, M. та ін. Розуміння імунного мікрооточення пухлини (TIME) для ефективної терапії. Нат. Мед. 24, 541 – 550 (2018).
Hartmann, N. та ін. Переважаюча роль контактного керівництва в інтрастромальному захопленні Т-клітин при раку підшлункової залози людини. Clin. Cancer Res. 20, 3422 – 3433 (2014).
Kuczek, DE та ін. Щільність колагену регулює активність Т-клітин, що інфільтрують пухлину. J. Immunother. Рак 7, 68 (2019).
Sun, X. та ін. Пухлина DDR1 сприяє вирівнюванню колагенових волокон, щоб стимулювати імунне виключення. природа 599, 673 – 678 (2021).
Ді Мартіно, Дж.С. та ін. Ніша ECM, що походить від пухлини, багата колагеном III типу, регулює стан спокою пухлинних клітин. Нац. Рак 3, 90 – 107 (2021).
Lampi, MC & Reinhart-King, CA Націлювання на жорсткість позаклітинного матриксу для послаблення захворювання: від молекулярних механізмів до клінічних випробувань. Наук. Пер. Мед. 10, eaao0475 (2018).
Diop-Frimpong, B., Chauhan, VP, Krane, S., Boucher, Y. & Jain, RK. Лозартан пригнічує синтез колагену I та покращує розподіл і ефективність нанотерапевтичних засобів у пухлинах. Proc. Natl Acad. Sci. США 108, 2909 – 2914 (2011).
Лю, Дж. та ін. Блокада TGF-β покращує розподіл та ефективність терапевтичних засобів при карциномі молочної залози шляхом нормалізації строми пухлини. Proc. Natl Acad. Sci. США 109, 16618 – 16623 (2012).
Ван Катсем, Е. та ін. Рандомізоване дослідження III фази пегворгіалуронідази альфа з наб-паклітакселом плюс гемцитабін для пацієнтів з метастатичною аденокарциномою підшлункової залози з високим вмістом гіалуронану. J. Clin. Онкол. 38, 3185 – 3194 (2020).
Provenzano, PP та ін. Ферментативне націлювання на строму усуває фізичні бар’єри для лікування протокової аденокарциноми підшлункової залози. Ракова клітина 21, 418 – 429 (2012).
Zhong, Y. та ін. Наноферменти, що активуються пухлинним мікрооточенням, для механічного ремоделювання позаклітинного матриксу та посиленої хіміотерапії пухлини. Адв. Функціональний. Матер. 31, 2007544 (2021).
Каруана, І. та ін. Гепараназа сприяє інфільтрації пухлини та протипухлинній активності CAR-перенаправлених Т-лімфоцитів. Нат. Мед. 21, 524 – 529 (2015).
Prescher, JA, Dube, DH & Bertozzi, CR Хімічне ремоделювання клітинних поверхонь у живих тварин. природа 430, 873 – 877 (2004).
Meng, D. та ін. Активована in situ NK-клітина як біоортогональна цільова імунотерапія солідної пухлини з наноносієм живих клітин. Адв. Функціональний. Матер. 32, 2202603 (2022).
Zhao, Y. та ін. Біоортогональне оснащення клітин CAR-T гіалуронідазою та антитілом, що блокує контрольні точки, для посиленої імунотерапії солідної пухлини. ACS Cent. наук. 8, 603 – 614 (2022).
Saatci, O. та ін. Націлювання на лізилоксидазу (LOX) долає стійкість до хіміотерапії при потрійному негативному раку молочної залози. Nat. Commun. 11, 2416 (2020).
Ніколя-Болуда, А. та ін. Реверсія затвердіння пухлини через інгібування зшивання колагену покращує міграцію Т-клітин і лікування анти-PD-1. eLife 10, e58688 (2021).
Де Віта, А. та ін. Лізилоксидаза створила ліпідні нановезикули для лікування потрійного негативного раку молочної залози. Sci. Rep. 11, 5107 (2021).
Kim, HY та ін. Виявлення активності лізилоксидази в позаклітинному матриксі пухлини за допомогою золотих нанозондів, функціоналізованих пептидом. Раки 13, 4523 (2021).
Kanapathipillai, M. та ін. Інгібування росту пухлини молочної залози за допомогою наночастинок, націлених на лізилоксидазу, для модифікації позаклітинного матриксу. Нано Летт. 12, 3213 – 3217 (2012).
Vennin, C. та ін. Тимчасове праймування тканин за допомогою інгібіції ROCK роз’єднує прогресування раку підшлункової залози, чутливість до хіміотерапії та метастази. Наук. Пер. Мед. 9, eaai8504 (2017). Переконлива демонстрація того, що зміна механічних властивостей середовища пухлини має великий потенціал для покращення терапії.
Murphy, KJ та ін. Технологія прижиттєвої візуалізації керує FAK-опосередкованим праймінгом у прецизійній медицині раку підшлункової залози відповідно до статусу Мерліна. Наук. Адв. 7, eabh0363 (2021).
Tran, E. та ін. Імунне націлювання на білок активації фібробластів викликає розпізнавання мультипотентних стромальних клітин кісткового мозку та кахексію. J. Exp. Мед. 210, 1125 – 1135 (2013).
Wang, L.-CS та ін. Націлювання на білок активації фібробластів у стромі пухлини за допомогою Т-клітин рецептора химерного антигену може пригнічувати ріст пухлини та посилювати імунітет господаря без серйозної токсичності. Імунол проти раку. Res. 2, 154 – 166 (2014).
Рюрик Я. Г. та ін. Т-клітини CAR, вироблені in vivo для лікування серцевої травми. наука 375, 91 – 96 (2022).
Correia, AL та ін. Печінкові зірчасті клітини пригнічують стан спокою раку молочної залози, який підтримується NK-клітинами. природа 594, 566 – 571 (2021).
Робертс, EW та ін. Виснаження стромальних клітин, що експресують білок активації фібробластів α, у скелетних м’язах і кістковому мозку призводить до кахексії та анемії. J. Exp. Мед. 210, 1137 – 1151 (2013).
Fujimori, K., Covell, DG, Fletcher, JE & Weinstein, JN. Моделювання аналізу глобального та мікроскопічного розподілу імуноглобуліну G, F(ab')2 та Fab у пухлинах. Рак Res. 49, 5656 – 5663 (1989).
Табданов Е. Д. та ін. Розробка Т-клітин для посилення тривимірної міграції через структурно та механічно складне мікрооточення пухлини. Nat. Commun. 12, 2815 (2021).
Вітлок, Б. Посилення знищення цитотоксичних Т-клітин шляхом виснаження PTEN (Weill Cornell Medicine, 2018).
Li, R., Ma, C., Cai, H. & Chen, W. Механоімунологія Т-клітин CAR з першого погляду. присл. наук. 7, 2002628 (2020).
Chockley, P.J., Ibanez-Vega, J., Krenciute, G., Talbot, L.J. & Gottschalk, S. CAR, налаштовані на синапс, посилюють протипухлинну активність імунних клітин. Нац. Біотехнол. https://doi.org/10.1038/s41587-022-01650-2 (2023). Це дослідження показує, що покращення архітектури імунологічного синапсу клітин CAR-NK призводить до чудової терапевтичної ефективності.
Roybal, K. T. та ін. Точне розпізнавання пухлини Т-клітинами з комбінаторними антигенсенсорними схемами. Осередок 164, 770 – 779 (2016).
Gordon, WR та ін. Механічна алостерія: докази потреби сили в протеолітичній активації виїмки. Розробник клітинка 33, 729 – 736 (2015).
Sloas, DC, Tran, JC, Marzilli, AM & Ngo, JT Рецептори, налаштовані на натяг, для синтетичної механотрансдукції та виявлення міжклітинної сили. Нац. Біотехнол. https://doi.org/10.1038/s41587-022-01638-y (2023).
Mittelheisser, V. та ін. Використання імунотерапії за допомогою наномедицини. Adv. Тер. 3, 2000134 (2020).
Perica, K. та ін. Кластеризація Т-клітинних рецепторів за допомогою наночастинок, викликана магнітним полем, посилює активацію Т-клітин і стимулює протипухлинну активність. ACS Nano 8, 2252 – 2260 (2014).
Majedi, FS та ін. Посилення активації Т-клітин за рахунок коливальних сил і сконструйованих антигенпрезентуючих клітин. Нано Летт. 19, 6945 – 6954 (2019).
Vis, B. та ін. Ультрамалі наночастинки діоксиду кремнію безпосередньо зв’язують рецепторний комплекс Т-клітин. Proc. Natl Acad. Sci. США 117, 285 – 291 (2020).
Кім, К.-С. та ін. Активація природних клітин-кілерів, опосередкована катіонними наночастинками, для ефективної імунотерапії раку. ACS Appl. Матер. Інтерфейси 12, 56731 – 56740 (2020).
Sim, T. та ін. Магнітоактивація та магнітно-резонансна томографія природних клітин-кілерів, мічених магнітними нанокомплексами для лікування солідних пухлин. ACS Nano 15, 12780 – 12793 (2021).
Лю, З. та ін. Нанорозмірні оптомеханічні приводи для керування механотрансдукцією в живих клітинах. Нат. Методи 13, 143 – 146 (2016).
Farhadi, A., Ho, GH, Sawyer, DP, Bourdeau, RW & Shapiro, MG Ультразвукове зображення експресії генів у клітинах ссавців. наука 365, 1469 – 1475 (2019).
Wang, X., Chen, X. & Yang, Y. Просторово-часовий контроль експресії генів трансгенною системою, що перемикається на світло. Нат. Методи 9, 266 – 269 (2012).
Пан, Ю. та ін. Механогенетика для дистанційного та неінвазивного контролю імунотерапії раку. Proc. Natl Acad. Sci. США 115, 992 – 997 (2018).
González-Bermúdez, B., Guinea, GV & Plaza, GR Досягнення в аспірації мікропіпетками: застосування в клітинній біомеханіці, моделі та розширені дослідження. Biophys. J. 116, 587 – 594 (2019).
Otto, O. та ін. Цитометрія деформації в режимі реального часу: механічне фенотипування клітини на льоту. Нат. Методи 12, 199 – 202 (2015). Впровадження сучасної та високопродуктивної технології RT-DC для вимірювання механічних властивостей клітин.
Gerum, R. та ін. В’язкопружні властивості суспендованих клітин, виміряні за допомогою деформаційної цитометрії зсуву. eLife 11, e78823 (2022).
Sánchez-Iranzo, H., Bevilacqua, C., Diz-Muñoz, A. & Prevedel, R. Набір даних 3D мікроскопії Бріллюена in vivo ока рибки даніо. Короткий опис даних. 30, 105427 (2020).
Conrad, C., Gray, KM, Stroka, KM, Rizvi, I. & Scarcelli, G. Механічна характеристика 3D вузликів раку яєчників за допомогою конфокальної мікроскопії Бріллюена. Стільниковий. мол. Біоінж. 12, 215 – 226 (2019).
Ву, П.-Х. та ін. Мікрореологія відстеження частинок ракових клітин у живих суб’єктів. Матер. Сьогодні 39, 98 – 109 (2020).
Falchuk, K. & Berliner, R. Гідростатичний тиск у перитубулярних капілярах і канальцях у нирках щурів. Ам. J. Фізіол. 220, 1422 – 1426 (1971).
Petrie, RJ & Koo, H. Пряме вимірювання внутрішньоклітинного тиску. Curr. протокол Cell Biol. 63(2014).
Harlepp, S., Thalmann, F., Follain, G. & Goetz, JG Гемодинамічні сили можна точно виміряти in vivo за допомогою оптичного пінцета. Мол. біол. клітинка 28, 3252 – 3260 (2017).
Монгера, А. та ін. В основі подовження осі тіла хребетних лежить перехід рідини в тверде тіло. природа 561, 401 – 405 (2018).
Монгера, А. та ін. Механіка клітинного мікрооточення, досліджена клітинами in vivo під час диференціації пресомітичної мезодерми рибок даніо. Нат. Матер. 22, 135 – 143 (2023).
Vorselen, D. et al. Мікроскопія сили тяги мікрочастинок виявляє субклітинні схеми напруги сили у взаємодіях імунної клітини та мішені. Nat. Commun. 11, 20 (2020).
Менг, Ф., Сучина, Т. М. і Сакс, Ф. Механічний датчик напруги на основі флуоресцентної передачі енергії для специфічних білків in situ: датчик механічного напруги. FEBS Дж. 275, 3072 – 3087 (2008).
Grashoff, C. та ін. Вимірювання механічного натягу через вінкулін виявляє регуляцію динаміки фокальної адгезії. природа 466, 263 – 266 (2010).
Conway, DE та ін. Напруга зсуву рідини на ендотеліальних клітинах модулює механічну напругу між VE-кадгерином і PECAM-1. Curr. Biol. 23, 1024 – 1030 (2013).
Пан, X. та ін. Оцінка міграції ракових клітин за допомогою флуоресцентного зонда, чутливого до в’язкості. Хім. Спілкування. 58, 4663 – 4666 (2022).
Shimolina, LE та ін. Зображення мікроскопічної в'язкості пухлини in vivo за допомогою молекулярних роторів. Sci. Rep. 7, 41097 (2017).
Сак, І. Магнітно-резонансна еластографія від фундаментальної механіки м’яких тканин до діагностичної візуалізації. Нац. Rev. Phys. 5, 25 – 42 (2022).
Сотеріу, Д. та ін. Швидке одноклітинне фізичне фенотипування механічно дисоційованих тканинних біоптатів. Нац. Біомед. інж. https://doi.org/10.1038/s41551-023-01015-3 (2023).
- Розповсюдження контенту та PR на основі SEO. Отримайте посилення сьогодні.
- PlatoData.Network Vertical Generative Ai. Додайте собі сили. Доступ тут.
- PlatoAiStream. Web3 Intelligence. Розширення знань. Доступ тут.
- ПлатонЕСГ. вуглець, CleanTech, Енергія, Навколишнє середовище, Сонячна, Поводження з відходами. Доступ тут.
- PlatoHealth. Розвідка про біотехнології та клінічні випробування. Доступ тут.
- джерело: https://www.nature.com/articles/s41565-023-01535-8
- :є
- : ні
- ][стор
- 001
- 01
- 07
- 08
- 1
- 10
- 100
- 102
- 107
- 11
- 110
- 114
- 116
- 118
- 12
- 120
- 121
- 125
- 13
- 130
- 14
- 15%
- 150
- 152
- 154
- 16
- 160
- 167
- 17
- 173
- 178
- 179
- 180
- 19
- 195
- 1998
- 1999
- 20
- 200
- 2001
- 2005
- 2006
- 2008
- 2010
- 2011
- 2012
- 2013
- 2014
- 2015
- 2016
- 2017
- 2018
- 2019
- 202
- 2020
- 2021
- 2022
- 2023
- 203
- 210
- 212
- 214
- 216
- 22
- 220
- 224
- 225
- 23
- 24
- 25
- 26
- 27
- 28
- 29
- 30
- 31
- 32
- 33
- 35%
- 3519
- 36
- 39
- 3d
- 40
- 41
- 43
- 45
- 46
- 49
- 50
- 51
- 52
- 53
- 54
- 58
- 60
- 65
- 66
- 67
- 7
- 70
- 72
- 73
- 75
- 77
- 8
- 80
- 84
- 87
- 9
- 90
- 91
- 97
- 98
- a
- МЕНЮ
- прискорювати
- За
- відповідно
- Рахунки
- накопичення
- точно
- через
- активоване
- активує
- Активація
- активний
- активно
- діяльність
- гострий
- регулювати
- аванси
- спорідненість
- AL
- вирівнювання
- змінений
- Посилення
- an
- аналіз
- та
- тварини
- антитіла
- антиген
- застосування
- архітектура
- ЕСТЬ
- стаття
- AS
- зовнішній вигляд
- прагнення
- оцінка
- Асоціація
- At
- збільшення
- збільшено
- збільшує
- аутоімунний
- Вісь
- b
- бар'єри
- заснований
- BE
- Краще
- між
- зміщення
- біомаркери
- Біоматеріали
- блокування
- кров
- тіло
- облігація
- Bonds
- КОСТАНО
- бум
- Рак молочної залози
- широко
- коричневий
- Брюс
- але
- by
- call
- CAN
- рак
- Ракові клітини
- захоплення
- автомобіль
- кардіол
- автомобілів
- Залучайте
- викликаний
- осередок
- Клітини
- стільниковий
- цент
- Центр
- Зміни
- Канал
- характеристика
- хімічний
- хіміотерапія
- Чень
- циркулює
- Звернення
- клас
- клацання
- Клінічний
- клінічні випробування
- Кластеризація
- Когорта
- комітет
- порівняння
- переконливий
- взаємодоповнюючі
- комплекс
- Компоненти
- стан
- диригент
- кон'югати
- контакт
- скорочення
- Автори
- контроль
- контроль
- управління
- управління
- Корнелл
- Коронавірус
- виправити
- корелюючі
- кора
- з'єднаний
- COVID-19
- критичний
- вирішальне значення
- Поточний
- різання
- цикл
- Циклічний
- цитотоксичний
- цитотоксичність
- дані
- de
- мертвий
- рішення
- певний
- Визначає
- визначення
- Це
- щільний
- Щільність
- залежить
- виснаження
- знищити
- Виявлення
- розробка
- діагностика
- діагностичний
- Діагностична візуалізація
- диктує
- різний
- радіомовлення
- прямий
- спрямований
- спрямований
- напрямки
- безпосередньо
- прямий
- Захворювання
- хвороби
- порушує
- чіткий
- розрізняти
- розподіл
- Різне
- Роздільна
- диски
- два
- тривалість
- під час
- динамічний
- динаміка
- e
- E&T
- e3
- Раніше
- край
- Ефективний
- ефектор
- ефекти
- ефективність
- ефективність
- ефективний
- піднесений
- усуваючи
- дозволяє
- енергія
- зачеплення
- займається
- інженерії
- Машинобудування
- підвищувати
- підвищена
- Підсилює
- підвищення
- конверт
- Навколишнє середовище
- ферментативні
- істотний
- Ефір (ETH)
- Європейська
- докази
- еволюція
- Здійснювати
- проявляти
- дослідження
- експонування
- висловлюючи
- вираз
- розширений
- зовнішній
- очей
- фасилітувати
- полегшує
- FAIL
- Провал
- милостей
- риси
- зворотний зв'язок
- вірність
- гнучкий
- потік
- рідина
- фокальний
- для
- Примусово
- Війська
- освіта
- від
- fu
- функція
- функціональний
- Функції
- фундаментальний
- майбутнє
- покоління
- генетичний
- геометрія
- Погляд
- Глобальний
- золото
- керувати
- керує
- сірий
- великий
- Зростання
- керівництво
- Гід
- Гамільтон
- забивати
- Мати
- Серце
- Серцева недостатність
- Генрі
- Високий
- вище
- основний момент
- дуже
- тримає
- господар
- Як
- HTTP
- HTTPS
- людина
- i
- Ідентифікація
- ii
- III
- Зображеннями
- імунний
- Імунна система
- імунітет
- імунологічні
- імунологія
- імунотерапія
- Impact
- наслідки
- поліпшений
- поліпшується
- поліпшення
- in
- неактивний
- Augmenter
- збільшений
- інфекція
- запалення
- запальний
- притаманне
- вроджений
- Інтеграція
- Взаємодії
- інтерфейс
- в
- вторгнення
- інвазивний
- Invest
- дослідити
- залучений
- ЙОГО
- подорож
- ключ
- нирка
- вбивця
- вбивство
- коо
- Кумар
- Веде за собою
- рівень
- використання
- li
- життя
- світло
- лін
- LINK
- пов'язаний
- жити
- Печінка
- життя
- місцевий
- Локалізація
- Довго
- Lou
- низький
- зниження
- макрофаги
- Маніпуляція
- відображення
- маркер
- матеріал
- Матриця
- зрілий
- засоби
- виміряний
- вимір
- вимір
- механічний
- механіка
- механізм
- механізми
- медицина
- відповідає
- кречет
- метод
- Мікроскопія
- міграція
- режим
- модель
- моделювання
- Моделі
- модифікований
- змінювати
- MOL
- молекулярний
- Двигуни
- миша
- м'яз
- Міокардит
- Наномедицина
- нанотехнології
- Природний
- природа
- навігація
- необхідний
- негативний
- мережу
- Нові
- нові хитрощі
- Нго
- ніша
- NK
- вузол
- ядерний
- of
- on
- онкологія
- Можливості
- оптимальний
- Оптимізувати
- or
- організація
- Інше
- Рак яєчників
- перевизначення
- частинка
- Минуле
- Патчі
- шляхів
- pacientes
- моделі
- персонал
- фаза
- Фаза III
- фенотип
- фізичний
- платформа
- plato
- Інформація про дані Платона
- PlatoData
- плюс
- Портал
- потенціал
- Точність
- представити
- подарунки
- тиск
- запобігає
- первинний
- зонд
- процеси
- Вироблений
- прогресія
- сприяти
- сприяє
- властивості
- передбачуваний
- захист
- Білок
- Білки
- забезпечує
- кількісна оцінка
- R
- Рандомізований
- діапазон
- швидко
- ЩУР
- ставка
- реакція
- реального часу
- останній
- приймач
- визнання
- визнавати
- скорочення
- посилання
- регулюється
- регулюючий
- Регулювання
- Регулятори
- звільнити
- актуальність
- віддалений
- нирковий
- реорганізація
- ремонт
- представляє
- вимагається
- вимога
- Вимагається
- дослідження
- Опір
- дозвіл
- резонанс
- Реагувати
- відповідь
- відповіді
- результати
- показувати
- Показали
- Виявляє
- огляд
- Дорожня карта
- Rock
- Роланд
- Роль
- ролі
- RSV
- s
- Sachs
- шрам
- філолог
- SCI
- науковий
- Чутливість
- датчик
- датчиків
- сепсис
- важкий
- Форма
- формуючи
- Показувати
- Шоу
- Сигнал
- сигнали
- підпис
- срібло
- один
- невеликий
- згладити
- суспільство
- М'який
- solid
- пісня
- Простір
- освоєння космосу
- пробіли
- просторовий
- спеціалізований
- конкретний
- конкретно
- Поширення
- весна
- стан
- впроваджений
- Статус
- ніжка
- Стовбурові клітини
- стимулює
- стрес
- структурно
- структура
- структурований
- Дослідження
- Вивчення
- чудовий
- придушення
- поверхню
- виживання
- підвісний
- перемикач
- Синапс
- Синапси
- синтез
- синтетичний
- система
- Systems
- T
- Т-клітини
- танг
- Мета
- цільове
- націлювання
- техніка
- Технологія
- Технологічні довідники
- Тестування
- Що
- Команда
- їх
- Лікувальний
- терапевтичні засоби
- лікування
- терапія
- через
- по всьому
- час
- тканину
- тканини
- до
- до
- до
- Відстеження
- тяги
- незаконний обіг
- Перетворення
- транзит
- перехід
- передавати
- пересадка
- захоплення
- лікувати
- лікування
- суд
- випробування
- спрацьовує
- Потрійний
- пухлина
- пухлини
- мелодії
- два
- тип
- ультразвук
- при
- розуміння
- на
- поглинання
- використання
- використання
- клапан
- змінна
- через
- вид
- природних умовах
- Уразливості
- W
- ван
- оса
- вайс
- коли
- білий
- вітер
- з
- без
- Work
- працює
- X
- ви
- зефірнет
- Чжан
- Zhao
